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Transmissionselektronenmikroskop

Fachliche Zuordnung Grundlagen der Biologie und Medizin
Förderung Förderung in 2008
Projektkennung Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) - Projektnummer 64223173
 
Erstellungsjahr 2012

Zusammenfassung der Projektergebnisse

Das Gerät wird in der Zentralen Forschungseinrichtung Elektronenmikroskopie der Medizinischen Hochschule Hannover betrieben und kann von am Gerät eingewiesenen Wissenschaftlern aus allen Bereichen der MHH genutzt werden. Projekte, die mit Hilfe des Gerätes durchgeführt wurden oder werden: 1. Ultrastrukturelle- und funktionelle Charakterisierung von GFP-Clathrin-LC: Elektronenmikroskopische Abbildungen demonstrieren die Entstehung von abnormal großen Clathrin-bedeckten Strukturen an der Plasmamembran in Zellen, die GFP-Clathrin LC (leichte Kette) exprimieren. Einzelmoleküldarstellungen von Clathrin Triskelia mit GFP-LC bzw. LC-GFP demonstrierten die durch GFP verursachten Veränderungen der Clathrinstruktur. 2. Einfluss von Clathrin auf die Krümmung der Membran von Liposomen, und Rekonstitution der Knospung und Abschnürung von Clathrin-umhüllten Vesikeln: Im Rahmen dieses Projektes konnte gezeigt werden, dass die durch die Polymerisation von Clathrin freigesetzte Energie ausreicht, um die Lipiddoppelschicht von Liposomen zu krümmen. Außerdem gelang es, Clathrin-umhüllte Vesikel von Liposomen freizusetzen und die dafür benötigten Proteine zu identifizieren. Die Ergebnisse dieses Projektes basierten auf qualitativen und quantitativen elektronenmikroskopischen Untersuchungen. 3. Untersuchungen zur Beschichtung von diversen Oberflächen mit regelmäßigen Clathrinstrukturen: Die strukturelle Charakterisierung der beschichteten Oberflächen erfolgt elektronenmikroskopisch. 4. Untersuchung des Sarkomeraufbaus in roten und weißen Skelettmuskelfasern von Mäusen mit einer MLP-W4R-Mutation. 5. Vergleich eines p14-Funktionsausfalls mit der Wirkung von Rapamycin auf murinen Myelozyten. 6. Elektronenmikroskopische Charakterisierung von MHC I- und MHC II-haltigen Membrandomänen. 7. Rolle von Mikrotubuli bei der Zusammenlagerung und Ausschleusung von Herpes Simplex Virus. 8. Eintritt von Herpes Simplex Virus 1 in unterschiedliche Zell-Linien. 9. Bin 1 (Amphiphysin 2): Seine Rolle in Entwicklung und Funktion der Niere Elektronentomographische Untersuchungen zur Verteilung und Funktion von Bin 1 während der Entwicklung und Erhaltung von Membrankrümmungen in Epithelzellen des Nephrons und des Sammelrohrs. 10. Single particle analysis of myosin and actomyosin in different nucleotide states.

Projektbezogene Publikationen (Auswahl)

  • A comparison of GFP-tagged clathrin light chains with fluorochromated light chains in vivo and in vitro. Traffic (2010),11, 1129-1140
    Hoffmann, A., Dannhauser, P. N., Groos, S., Hinrichsen, L., Curth, U., Ungewickell, E. J.
  • Chaperone role for proteins p618 and p892 in the extracellular tail development of Acidianus two-tailed virus. J Virol. (2011), 85, 4812-4821
    Scheele, U., Erdmann, S., Ungewickell, E. J., Felisberto-Rodrigues, C., Ortiz-Lombardia, M., Garrett, R. A.
  • Uncoupling uncoating of herpes simplex virus genomes from their nuclear import and gene expression. J Virol. (2011), 85:4271-4283
    Rode K, Döhner K, Binz A, Glass M, Strive T, Bauerfeind R, Sodeik B
  • Differential regulation of node formation, nodal ciliogenesis and cilia positioning by Noto and Foxj1. Development 139 (2012), 1276–1284
    Alten L, Schuster-Gossler K, Beckers A, Groos S, Ulmer B, Hegermann J, Ochs M, and Gossler A
  • The C-terminus of the large Tegument Protein pUL36 Contains Multiple Capsid Binding Sites that Function differently During Assembly and Cell Entry of Herpes Simplex Virus. J Virol. (2012), 86:3682-36700
    Schipke J, Pohlmann A, Diestel R, Binz A, Rudolph K, Nagel CH, Bauerfeind R, Sodeik B
 
 

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