Transmissionselektronenmikroskop
Zusammenfassung der Projektergebnisse
Das Mikroskop wird in breitem Umfang für Arbeiten innerhalb des SFB 877 („Proteolysis as a Regulatory Event in Pathophysiology“; Sprecher Prof. S. Rose-John) genutzt. Hierbei stehen vor allem Fragestellungen zur Untersuchung struktureller Veränderungen in Mausmodellen sowie zur ultrastrukturellen Lokalisierung beteiligter Proteine (Meprine, IL-6-Rezeptor, SPPL2α/β u.a) im Fokus. Weiterhin wurden Fragestellungen innerhalb des SPP1580 (Intracellular compartments as places of pathogen-host-interactions, Prof. P. Saftig) und des GRK 1459 („Sortierung und Wechselwirkungen zwischen Proteinen subzellulärer Kompartimente“, Sprecher Prof. T. Braulke und Prof. P. Saftig) bearbeitet. In einer Kooperation mit Prof. Rosenstiel (IKMB, Kiel) werden Präparate analysiert, die Daten zum ER Stress, der Autophagie, der Proteindegradation sowie der intestinalen Homeostase liefern sollen. Die Nutzung des Elektronenmikroskops erfolgte weiterhin durch die Klinik für Ophthalmologie, UK-SH, Campus Kiel (Prof. Klettner, Prof. Roider), um degenerative Veränderungen an der Bruchschen Membran sowie altersbedingte Veränderungen des Pigmentepithels ultrastrukturell aufzuklären. Gemeinsam mit Prof. N. Frey (Klinik für Innere Medizin, UK-SH, Campus Kiel) bearbeiten wir mikroskopische Fragestellungen zu kardiovaskulären Erkrankungen, während in den Projekten aus dem Institut für Immunologie (Prof. S. Schütze, Prof. O.Janßen) einerseits die Regulation der pro- und antiapoptotischen TNF-R1 Signalvermittlung, anderseits Reifung und Subpopulations-spezifische Verteilung von zytotoxischen Effektor-Vesikeln in humanen T- und NK-Zellen untersucht werden. In Kooperation mit Prof. Mirko Schmidt (Anatomisches Institut, Universität Mainz) konnten wir bereits erste strukturelle Informationen zum Matrixprotein EGFL7 gewinnen. Weiterhin wird das Gerät für zahlreiche Einzelprojekte von Arbeitsgruppen innerhalb des Anatomischen Institutes genutzt.
Projektbezogene Publikationen (Auswahl)
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Meprin alpha and meprin beta: Procollagen proteinases in health and disease. Matrix Biol 2015, 44-46, 7-13
Prox, J.; Arnold, P.; Becker-Pauly, C.
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A mouse model for fucosidosis recapitulates storage pathology and neurological features of the milder form of the human disease. Dis Model Mech. 2016 Sep 1;9(9):1015-28
Wolf H, Damme M, Stroobants S, D'Hooge R, Beck HC, Hermans-Borgmeyer I, Lüllmann-Rauch R, Dierks T, Lübke T
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Solid nanoemulsion as antigen and immunopotentiator carrier for transcutaneous immunization. Cell Immunol 2016, 308, 35-43
Gogoll, K.; Stein, P.; Lee, K. D.; Arnold, P.; Peters, T.; Schild, H.; Radsak, M.; Langguth, P.
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Disruption of the vacuolar-type H+-ATPase complex in liver causes MTORC1-independent accumulation of autophagic vacuoles and lysosomes. Autophagy. 2017 Apr 3;13(4):670-685
Kissing S, Rudnik S, Damme M, Lüllmann-Rauch R, Ichihara A, Kornak U, Eskelinen EL, Jabs S, Heeren J, De Brabander JK, Haas A, Saftig P
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Functional characterization of the lysosomal membrane protein TMEM192 in mice. Oncotarget. 2017 Jul 4;8(27):43635-43652
Nguyen TL, Schneppenheim J, Rudnik S, Lüllmann-Rauch R, Bernreuther C, Hermans- Borgmeyer I, Glatzel M, Saftig P, Schröder B
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Meprin metalloproteases: Molecular regulation and function in inflammation and fibrosis. Biochim Biophys Acta 2017
Arnold, P.; Otte, A.; Becker-Pauly, C.
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Mucus Detachment by Host Metalloprotease Meprin beta Requires Shedding of Its Inactive Pro-form, which Is Abrogated by the Pathogenic Protease RgpB. Cell Rep 21, 2090-2103
Wichert R, Ermund A, Schmidt S, Schweinlin M, Ksiazek M, Arnold P, Knittler K, Wilkens F, Potempa B, Rabe B, Stirnberg M, Lucius R, Bartsch JW, Nikolaus S, Falk-Paulsen M, Rosenstiel P, Metzger M, Rose-John S, Potempa J, Hansson GC, Dempsey PJ, Becker-Pauly C
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The Influence of MHC Class II on B Cell Defects Induced by Invariant Chain/CD74 N-Terminal Fragments. J Immunol 2017
Schneppenheim, J.; Loock, A. C.; Huttl, S.; Schweizer, M.; Lullmann-Rauch, R.; Oberg, H. H.; Arnold, P.; Lehmann, C. H. K.; Dudziak, D.; Kabelitz, D.; Lucius, R.; Lennon-Dumenil, A. M.; Saftig, P.; Schroder, B.
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Long-term treatment with anti- VEGF does not induce cell aging in primary retinal pigment epithelium. Exp Eye Res. 2018 Mar 6;171:1-11
Schottler J, Randoll N, Lucius R, Caliebe A, Roider J, Klettner A
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Thermal Stimulation of the Retina Reduces Bruch’s Membrane Thickness in Age Related Macular Degeneration Mouse Models. Transl Vis Sci Technol. 2018 May 1;7(3):2
Tode J, Richert E, Koinzer S, Klettner A, von der Burchard C, Brinkmann R, Lucius R, Roider J
