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EXC 81:  Zelluläre Netzwerke: Von der Analyse molekularer Mechanismen zum quantitativen Verständnis komplexer Funktionen

Fachliche Zuordnung Grundlagen der Biologie und Medizin
Mikrobiologie, Virologie und Immunologie
Neurowissenschaften
Förderung Förderung von 2006 bis 2019
Projektkennung Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) - Projektnummer 24122740
 
Erstellungsjahr 2019

Zusammenfassung der Projektergebnisse

Die Heidelberger Lebenswissenschaften zeichnen sich durch eine außergewöhnliche Dichte international renommierter Institutionen in engster Nachbarschaft aus. Heidelberg hat eine für Deutschland einzigartige kritische Masse an wissenschaftlicher und technologischer Expertise, und ist daher ein idealer Standort für ein interdisziplinäres Center mit der Zielsetzung, die Struktur, Funktion und Evolution subzellulärer und suprazellulärer Netzwerke zu verstehen. CellNetworks, gegründet in 2006, vereinigt eine große Zahl ausgewiesener Gruppen aller Heidelberger biowissenschaftlicher Institutionen sowie Experten (wird bei allgemeiner Personennennung die männliche Form verwendet, ist stets auch die weibliche oder diverse Form gemeint) aus Mathematik, Bioinformatik, Chemie und Physik, um grundlegende Fragen zu Netzwerkstruktur, -dynamik und –regulation mit quantitativen Methoden zu beantworten. Unser Ansatz profitierte immens von der Kombination molekularer und bioinformatischer Ansätze und führte zu einem besseren Verständnis zellulärer Prozesse. Ein „bottom-up“ Prozess zur Identifizierung der kommenden Forschungsfragen, die im Rahmen des Clusters besonders gefördert wurden, führte zu sechs aufregenden Projekten, deren Ergebnisse drei neue Sonderforschungsbereiche und ein DFG gefördertes Netzwerk für Elektronenmikroskopie untertsützten. Eine Voraussetzung für diesen Erfolg liegt in der zusätzlichen Rekrutierung von exzellenten Wissenschaftlern bevorzugt an der Schnittstelle von Disziplinen (Professur für Proteinevolution) oder von Technologiespezialisten (Professuren für Cryo-Elektronenmikroskopie und Proteomik). Zusätzlich haben zehn Nachwuchsgruppen, finanziert durch das Cluster, und zehn Nachwuchsgruppen finanziert von der Chica und Heinz Schaller-Stiftung, eine äußerst anregende Forschungsumgebung für junge Wissenschaftler geschaffen. Unsere neuen Kollegen stimulierten die technologieorientierte Weiterentwicklung und dynamische Einbindung neuer Forschungsfragen in das Forschungsportfolio der molekularen Lebenswissenschaften in Heidelberg. Parallel dazu bildeten die zentralen Core Facilities mit den Bereichen des technischen Service, der Projektberatung und der techniknahen Ausbildung eine wichtige Verbindung zwischen Forschenden verschiedener Disziplinen und Statusgruppen der Universität und unserer Partnerinstitutionen. CellNetworks war, ist und wird eine treibende Kraft für die Integration der molekularen Biowissenschaften in Heidelberg sein und zwar über institutionelle und disziplinäre Grenzen hinweg. In Zukunft wird CellNetworks als zentrale Einrichtung der Universität Heidelberg die Core Technologie- Entwicklung anführen. Wir haben streng darauf geachtet, dass die CellNetworks Professuren, Leiter der Core Facilities und Mitarbeiterinnen des Projektbüros langfristig an der Uni Heidelberg tätig sind. Somit ist gesichert, dass nicht nur die Mitglieder des Clusters, sondern darüber hinaus die gesamte Forschungscommunity der Lebenswissenschaften in Heidelberg von CellNetworks weiterhin profitiert.

Link zum Abschlussbericht

https://dx.doi.org/10.2314/KXP:1697276407

Projektbezogene Publikationen (Auswahl)

  • Composition and three-dimensional architecture of the dengue virus replication and assembly sites. Cell Host Microbe. 2009 Apr 23;5(4):365-75
    Welsch S, Miller S, Romero-Brey I, Merz A, Bleck CK, Walther P, Fuller SD, Antony C, Krijnse- Locker J, Bartenschlager R
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.chom.2009.03.007)
  • HIV-1 Nef interferes with host cell motility by deregulation of cofilin. Cell Host Microbe. 2009 Aug 20;6(2):174-86
    Stolp B, Reichman-Fried M, Abraham L, Pan X, Giese SI, Hannemann S, Goulimari P, Raz E, Grosse R and Fackler OT
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.chom.2009.06.004)
  • Autoregulatory and repressive inputs localize Hydra Wnt3 to the head organizer. Proc Natl Acad Sci USA. 2011 May 31;108(22):9137-42
    Nakamura Y1, Tsiairis CD, Özbek S, Holstein TW
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1073/pnas.1018109108)
  • Hemoglobins S and C interfere with actin remodeling in Plasmodium falciparum-infected erythrocytes. Science. 2011 Dec 2;334(6060):1283-6
    Cyrklaff M, Sanchez CP, Kilian N, Bisseye C, Simpore J, Frischknecht F, Lanzer M
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1126/science.1213775)
  • Nuclear calcium-VEGFD signaling controls maintenance of dendrite arborization necessary for memory formation. Neuron. 2011 Jul 14;71(1):117-30
    Mauceri D, Freitag HE, Oliveira AM, Bengtson CP, Bading H
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.neuron.2011.04.022)
  • Quantitative evaluation of mechanosensing of cells on dynamically tunable hydrogels. J Am Chem Soc. 2011 Feb 9;133(5):1367-74
    Yoshikawa HY, Rossetti FF, Kaufmann S, Kaindl T, Madsen J, Engel U, Lewis AL, Armes SP and Tanaka M
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1021/ja1060615)
  • Maturation-dependent HIV-1 surface protein redistribution revealed by fluorescence nanoscopy. Science. 2012 Oct 26;338(6106):524-8
    Chojnacki J, Staudt T, Glass B, Bingen P, Engelhardt J, Anders M, Schneider J, Müller B, Hell SW, Kräusslich HG
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1126/science.1226359)
  • SAMHD1 restricts HIV-1 infection in resting CD4+ T cells. Nat Med. 2012 Nov;18(11):1682-7
    Baldauf HM, Pan X, Erikson E, Schmidt S, Daddacha W, Burggraf M, Schenkova K, Ambiel I, Wabnitz G, Gramberg T, Panitz S, Flory E, Landau NR, Sertel S, Rutsch F, Lasitschka F, Kim B, König R, Fackler OT and Keppler OT
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/nm.2964)
  • Structure and dynamics of the ATP-bound open conformation of Hsp70 chaperones. Molecular Cell. 2012 Dec 28;48(6):863-74
    Kityk R, Kopp J, Sinning I and Mayer MP
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.molcel.2012.09.023)
  • Synchronizing nuclear import of ribosomal proteins with ribosome assembly. Science. 2012 Nov 2;338(6107):666-71
    Kressler D, Bange G, Ogawa Y, Stjepanovic G, Bradatsch B, Pratte D, Amlacher S, Strauß D, Yoneda Y, Katahira J, Sinning I and Hurt E
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1126/science.1226960)
  • Tandem fluorescent protein timers for in vivo analysis of protein dynamics. Nat. Biotechnol. 2012 Jun 24;30(7):708-14
    Khmelinskii A, Keller PJ, Bartosik A, Meurer M, Barry JD, Mardin BR, Kaufmann A, Trautmann S, Wachsmuth M, Pereira G, Huber W, Schiebel E and Knop M
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/nbt.2281)
  • Detecting endogenous SUMO targets in mammalian cells and tissues. Nat Struct Mol Biol. 2013 Apr;20(4):525-31
    Becker J, Barysch SV, Karaca S, Dittner C, Hsiao HH, Berriel Diaz M, Herzig S, Urlaub S and Melchior F
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/nsmb.2526)
  • Robust RNAi enhancement via human Argonaute-2 overexpression from plasmids, viral vectors and cell lines. Nucleic Acids Res. 2013 Nov;41(21):e199
    Börner K, Niopek D, Cotugno G, Kaldenbach M, Pankert T, Willemsen J, Zhang X, Schürmann N, Mockenhaupt S, Serva A, Hiet MS, Wiedtke E, Castoldi M, Starkuviene V, Erfle H, Gilbert DF, Bartenschlager R, Boutros M, Binder M, Streetz K, Kräusslich HG and Grimm D
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1093/nar/gkt836)
  • AAV8-mediated in vivo overexpression of miR-155 enhances the protective capacity of genetically-attenuated malarial parasites. Mol Ther. 2014, Dec;22(12):2130-41
    Hentzschel F, Hammerschmidt-Kamper C, Börner K, Heiss K, Knapp B, Sattler JM, Kaderali L, Castoldi M, Bindman JG, Malato Y, Willenbring H, Mueller AK and Grimm D
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/mt.2014.172)
  • DENR•MCT-1 Promotes Translation Reinitiation Downstream of uORFs to Control Tissue Growth. Nature. 2014 Aug 14; 512(7513): 208–212
    Schleich S, Strassburger K, Janiesch PC, Koledachkina T, Miller KK, Haneke K, Cheng Y-C, Kuechler K, Stoecklin G, Duncan KE and Teleman AA
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/nature13401)
  • FHOD1 interaction with nesprin-2G mediates TAN line formation and nuclear movement. Nat Cell Biol., 2014 Jul;16(7):708-15
    Kutscheidt S, Zhu R, Antoku S, Luxton GGW, Stagljar I, Fackler OT and Gundersen GG
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/ncb2981)
  • Genome-wide siRNA screens reveal VAMP3 as a novel host factor required for Uukuniemi virus late penetration. J Virol. 2014 Aug;88(15):8565-78
    Meier R, Franceschini A, Horvath P, Tetard M, Mancini R, von Mering C, Helenius A and Lozach PY
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1128/JVI.00388-14)
  • Impaired path integration and grid cell spatial periodicity in mice lacking GluA1-containing AMPA receptors. J Neurosci. 2014 Apr 30;34(18):6245-59
    Allen K, Gil M, Resnik E, Toader O, Seeburg P, Monyer H
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.4330-13.2014)
  • Investigating the role of F-actin in human immunodeficiency virus assembly by live-cell microscopy. J Virol. 2014 Jul;88(14):7904-14
    Rahman SA, Koch P, Weichsel J, Godinez WJ, Schwarz U, Rohr K, Lamb DC, Kräusslich HG and Müller B
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1128/JVI.00431-14)
  • Male-female communication triggers calcium signatures during fertilization in Arabidopsis. Nat Commun. 2014 Aug 22;5:4645
    Denninger P, Bleckmann A, Lausser A, Vogler F, Ott T, Ehrhardt DW, Frommer WB, Sprunck S, Dresselhaus T, Grossmann G
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/ncomms5645)
  • Quantitative microscopy of functional HIV post-entry complexes reveals association of replication with the viral capsid. Elife. 2014 Dec 17;3:e04114
    Peng K, Muranyi W, Glass B, Laketa V, Yant SR, Tsai L, Cihlar T, Müller B, Kräusslich HG
    (Siehe online unter https://doi.org/10.7554/eLife.04114)
  • Sequential actions of β-catenin and Bmp pattern the oral nerve net in Nematostella vectensis. Nat Commun. 2014 Dec 23;5:5536
    Watanabe H, Kuhn A, Fushiki M, Agata K, Özbek S, Fujisawa T, Holstein TW
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/ncomms6536)
  • The histone-fold protein CHRAC14 influences chromatin composition in response to DNA damage. Cell Rep. 2014 Apr 24;7(2):321-330
    Mathew V, Pauleau AL, Steffen N, Bergner A, Becker PB, Erhardt S
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.celrep.2014.03.008)
  • Wnt-Fzd signaling sensitizes peripheral sensory neurons via distinct non-canonical pathways. Neuron. 2014 Jul 2;83(1):104-21
    Simonetti M, Agarwal N, Stösser S, Bali KK, Karaulanov E, Kamble R, Pospisilova B, Kurejova M, Birchmeier W, Niehrs C, Heppenstall P, Kuner R
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.neuron.2014.05.037)
  • Alleviation of off-target effects from vector-encoded shRNA via co-delivered RNA decoys. Proc Natl Acad Sci USA. 2015 Jul 28;112(30):E4007-16
    Mockenhaupt S, Grosse S, Rupp D, Bartenschlager R and Grimm D
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1073/pnas.1510476112)
  • Cytoadhesion of Plasmodium falciparum-infected erythrocytes to chondroitin-4-sulfate is cooperative and shear enhanced. Blood. 2015 Jan 8;125(2):383-91. doi: 10.1182/blood-2014-03-561019
    Rieger H, Yoshikawa HY, Quadt K, Nielsen MA, Sanchez CP, Salanti A, Tanaka M, Lanzer M
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1182/blood-2014-03-561019)
  • Direct observation of ultrafast collective motions in CO myoglobin upon ligand dissociation. Science. 2015 Oct 23;350(6259):445-50
    Barends TRM, Foucar L, Ardevol A, Nass K, Aquila A, Botha S, Doak RB, Falahati K, Hartmann E, Hilpert M, Heinz M, Hoffmann MC, Köfinger J, Koglin JE, Kovacsova G, Liang M, Milathianaki D, Lemke H, Reinstein J, Roome CM, Shoeman RL, Williams GJ, Burghardt I, Hummer G, Boutet S, Schlichting I
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1126/science.aac5492)
  • Fundamental properties of unperturbed haematopoiesis from stem cells in vivo. Nature. 2015 Feb 26;518(7540):542-6
    Busch K, Klapproth K, Barile M, Flossdorf M, Holland-Letz T, Schlenner SM, Reth M, Höfer T, Rodewald HR
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/nature14242)
  • LncRNA Khps1 regulates expression of the proto-oncogene SPHK1 via triplex-mediated changes in chromatin structure. Mol Cell. 2015 Nov 19;60(4):626-36
    Postepska-Igielska A, Giwojna A, Gasri-Plotnitsky L, Schmitt N, Dold A, Ginsberg D, Grummt I
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.molcel.2015.10.001)
  • Mammalian SRP receptor switches the Sec61 translocase from Sec62 to SRP-dependent translocation. Nat Comms. 2015 Dec 4;6:10133
    Jadhav B, McKenna M, Johnson N, High S, Sinning I and Pool MR
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/ncomms10133)
  • Mechismo: predicting the mechanistic impact of mutations and modifications on molecular interactions. Nucleic Acids Research, 43.2: e10, 2015
    Betts MJ, Lu Q, Jiang YY, Drusko A, Wichmann O, Utz M, Valtierra-Gutiérrez IA, Schlesner M, Jaeger N, Jones DT, Pfister S, Lichter P, Eils R, Siebert R, Bork P, Apic G, Gavin AC, Russell RB
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1093/nar/gku1094)
  • Modulation of Presynaptic Release Probability by the Vertebrate-Specific Protein Mover. Neuron. 2015 Aug 5;87(3):521-33
    Körber C, Horstmann H, Venkatamarani V, Herrmannsdörfer F, Kremer T, Kaiser M, Schwenger DB, Ahmed S, Dean C, Dresbach T and Kuner T
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.neuron.2015.07.001)
  • NS5A Domain 1 and Polyprotein Cleavage Kinetics Are Critical for Induction of Double-Membrane Vesicles Associated with Hepatitis C Virus Replication. MBio. 2015 Jul 7;6(4):e00759
    Romero-Brey I, Berger C, Kallis S, Kolovou A, Paul D, Lohmann V, Bartenschlager R
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1128/mBio.00759-15)
  • The exosome is recruited to RNA substrates through specific adapter proteins. Cell. 2015 Aug 27;162(5):1029-38
    Thoms M, Thomson E, Baßler J, Gnädig M, Griesel S and Hurt E
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.cell.2015.07.060)
  • Transcriptional refractoriness is dependent on core promoter architecture. Nat Commun. 2015 Apr 8;6:6753
    Cesbron F, Oehler M, Ha N, Sancar G, Brunner M
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/ncomms7753)
  • Triggering HIV polyprotein processing by light using rapid photodegradation of a tight-binding protease inhibitor. Nat Commun. 2015 Mar 9;6:6461
    Schimer J, Pavova M, Anders M, Pachl P, Sácha P, Cigler P, Weber J, Majer P, Rezácová P, Kräusslich HG, Müller B and Konvalinka J
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/ncomms7461)
  • Zincfinger nuclease-based double strand breaks attenuate malaria parasites and reveal rare microhomology mediated end joining. Genome Biology. 2015 Nov 17;16:249
    Singer M, Marshall J, Heiss K, Mair GR, Grimm D, Mueller AK and Frischknecht F
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1186/s13059-015-0811-1)
  • (2016) MYC/MIZ1-dependent gene repression inversely coordinates the circadian clock with cell cycle and proliferation. Nat Commun. 2016 Jun 24;7:11807
    Shostak A, Ruppert B, Ha N, Bruns P, Toprak UH; ICGC MMML-Seq Project, Eils R, Schlesner M, Diernfellner A, Brunner M
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/ncomms11807)
  • A genetic interaction map of cell cycle regulators. Molecular Biology of the Cell, 2016
    Billmann M, Horn T, Fischer B, Sandmann T, Huber W, and Boutros M
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1091/mbc.E15-07-0467)
  • A New Population of Parvocellular Oxytocin Neurons Controlling Magnocellular Neuron Activity and Inflammatory Pain Processing. Neuron. 2016 Mar 16;89(6):1291-1304
    Eliava M, Melchior M, Knobloch-Bollmann HS, Wahis J, da Silva Gouveia M, Tang Y, Ciobanu AC, Triana Del Rio R, Roth LC, Althammer F, Chavant V, Goumon Y, Gruber T, Petit- Demoulière N, Busnelli M, Chini B, Tan LL, Mitre M, Froemke RC, Chao MV, Giese G, Sprengel R, Kuner R, Poisbeau P, Seeburg PH, Stoop R, Charlet A, Grinevich V
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.neuron.2016.01.041)
  • ARHGEF17 is an essential spindle assembly checkpoint factor that targets Mps1 to kinetochores. J Cell Biol. 2016 Mar 14;212(6):647-59
    Isokane M, Walter T, Mahen R, Nijmeijer B, Hériché J-K, Miura K, Maffini S, Ivanov MP, Kitajima TS, Peters J-M and Ellenberg J
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1083/jcb.201408089)
  • Blocking sense strand activity improves potency, safety and specificity of anti-hepatitis B virus short hairpin RNA. EMBO Mol Med. 2016 Sep 1;8(9):1082-98
    Michler T, Grosse S, Mockenhaupt S, Röder N, Stückler F, Knapp B, Ko C, Heikenwälder M, Protzer U, and Grimm D.
    (Siehe online unter https://doi.org/10.15252/emmm.201506172)
  • Dengue Virus Perturbs Mitochondrial Morphodynamics to Dampen Innate Immune Responses. Cell Host Microbe. 2016 Sep 14;20(3):342-356
    Chatel-Chaix L, Cortese M, Romero-Brey I, Bender S, Neufeldt CJ, Fischl W, Scaturro P, Schieber N, Schwab Y, Fischer B, Ruggieri A, Bartenschlager R
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.chom.2016.07.008)
  • Differential use of the C-type lectins L-SIGN and DC-SIGN for phlebovirus endocytosis. Traffic. 2016 Jun;17(6):639-56
    Léger P, Tetard M, Youness B, Cordes N, Rouxel RN, Flamand M, and Lozach PY
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1111/tra.12393)
  • Dnmt3a2: a hub for enhancing cognitive functions. Mol Psychiatry. 2016 Aug;21(8):1130-6
    Oliveira AMM, Hemstedt TJ, Freitag HE, and Bading H
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/mp.2015.175)
  • Expanding the Circuitry of Pluripotency by Selective Isolation of Chromatin-Associated Proteins. Mol Cell. 2016 Nov 3;64(3):624-635
    Rafiee MR, Girardot C, Sigismondo G, Krijgsveld J
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.molcel.2016.09.019)
  • Force-producing ADP state of myosin bound to actin. Proc Natl Acad Sci USA. 2016 Mar 29;113(13):E1844-52
    Wulf SF, Ropars V, Fujita-Becker S, Oster M, Hofhaus G, Trabuco LG, Pylypenko O, Sweeney HL, Houdusse AM and Schröder RR
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1073/pnas.1516598113)
  • Frequent mechanical stress suppresses proliferation of mesenchymal stem cells from human bone marrow without loss of multipotency. Sci Rep. 2016 Apr 15;6:24264
    Frank V, Kaufmann S, Wright R, Horn P, Yoshikawa HY, Wuchter P, Madsen J, Lewis AL, Armes SP, Ho AD and Tanaka M
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/srep24264)
  • Integration of light and metabolic signals for stem cell activation at the shoot apical meristem. Elife. 2016 Jul 11;5. pii: e17023
    Pfeiffer A, Janocha D, Dong Y, Medzihradszky A, Schöne S, Daum G, Suzaki T, Forner J, Langenecker T, Rempel E, Schmid M, Wirtz M, Hell R, and Lohmann JU
    (Siehe online unter https://doi.org/10.7554/eLife.17023)
  • MTHFD1 controls DNA methylation in Arabidopsis. Nature Comm. 2016 Jun 13;7:11640
    Groth M, Moissiard G, Wirtz M, Wang H, Garcia-Salinas C, Ramos-Parra PA, Bischof S, Feng S, Cokus SJ, John A, Smith DC, Zhai J, Hale CJ, Long JA, Hell R, Díaz de la Garza RI, Jacobsen SE
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/ncomms11640)
  • Oxidative insult can induce malaria-protective trait of sickle and fetal erythrocytes. Nat Commun. 2016 Nov 8;7:13401
    Cyrklaff M, Srismith S, Nyboer B, Burda K, Hoffmann A, Lasitschka F, Adjalley S, Bisseye C, Simpore J, Mueller AK, Sanchez CP, Frischknecht F, Lanzer M
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/ncomms13401)
  • Reovirus intermediate subviral particles constitute a strategy to infect intestinal epithelial cells by exploiting TGF-β dependent pro-survival signaling. Cell. Microbiol. 2016 Dec;18(12):1831-1845
    Stanifer ML, Rippert A, Kazakov A, Willemsen J, Bucher D, Bender S, Bartenschlager R, Binder M and Boulant S
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1111/cmi.12626)
  • Rules and Self-Organizing Properties of Post-embryonic Plant Organ Cell Division Patterns. Curr Biol. 2016 Feb 22;26(4):439-49
    von Wangenheim D, Fangerau J, Schmitz A, Smith RS, Leitte H, Stelzer EHK and Maizel A
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1016/j.cub.2015.12.047)
  • Stimulated Emission Depletion Nanoscopy Reveals Time-Course of Human Immunodeficiency Virus Proteolytic Maturation. ACS Nano. 2016 Sep 27;10(9):8215-22
    Hanne J, Göttfert F, Schimer J, Anders-Össwein M, Konvalinka J, Engelhardt J, Müller B, Hell SW, Kräusslich HG
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1021/acsnano.6b03850)
  • The RanBP2/Ran- GAP1SUMO1/Ubc9 SUMO E3 ligase is a disassembly machine for Crm1-dependent nuclear export complexes. Nature Comm. 2016 May 10;7:11482
    Ritterhoff T, Das H, Hofhaus G, Schröder RR, Flotho A and Melchior F
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/ncomms11482)
  • Tuning a cellular lipid kinase activity adapts hepatitis C virus to replication in cell culture. Nat Microbiol. 2016 Dec19;2:16247
    Harak C, Meyrath M, Romero-Brey I, Schenk C, Gondeau C, Schult P, Esser-Nobis K, Saeed M, Neddermann P, Schnitzler P, Gotthardt D, Perez-Del-Pulgar S, Neumann-Haefelin C, Thimme R, Meuleman P, Vondran FW, De Francesco R, Rice CM, Bartenschlager R, Lohmann V
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1038/nmicrobiol.2016.247)
  • Uukuniemi virus as a tick-borne virus model. J Virol. 2016 Jul 11;90(15):6784-98
    Mazelier M, Rouxel RN, Zumstein M, Mancini R, Bell-Sakyi L, and Lozach PY
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1128/JVI.00095-16)
  • A unique profilin-actin interface is important for malaria parasite motility. PLoS pathog. 2017 May 26;13(5):e1006412
    Moreau CA, Bhargav SP, Kumar H, Quadt KA, Piirainen H, Strauss L, Kehrer J, Streichfuss M, Spatz JP, Wade RC, Kursula I, Frischknecht F
    (Siehe online unter https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1006412)
  • An objective comparison of cell-tracking algorithms. Nat. Methods. 2017 Dec;14(12):1141-1152
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